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培养细胞转化实验

758 人阅读发布时间:2015-11-16 15:51

肿瘤对人类健康危害极大,但由于其发生因素复杂,包括体内因素和环境因素,如遗传因素,物理、化学、生物因素等,导致各种肿瘤的发生机制各不相同。至今尚有许多肿瘤的发病机制、准确诊断、有效治疗均不明确,尚需深入研究。肿瘤细胞具有永生性,在体外可以无限传代培养,因此体外细胞培养技术则成为研究肿瘤细胞生物学特性、肿瘤发生机制以及肿瘤药物的筛选等重要手段。本章主要介绍细胞转化试验、肿瘤细胞浸润实验、肿瘤细胞癌基因及抑癌基因检测等方面的相关实验。


细胞恶性转化,即癌变,是一个发生在体内的过程,但在细胞培养条件下,可以用人T方法诱发产生,建立体外癌变模型。因此,人工诱发体外培养细胞的转化,是研究癌变原理的重要方法,其优点不仅是重复性好,可广泛用于研究可疑致癌因素的作用和检测环境中的致癌物,并且在细胞发生转化后,能够进行直接观察和做各种分析。为此,这一技术当前在国内外已普遍应用。转化实验的方法主要包括人工诱导细胞转化、试管内诱发癌实验法和体内分化诱导方法。


一、人工诱发细胞恶性转化


在细胞培养条件下,用化学、物理和生物等各种致癌物可人为地诱发细胞发生恶性转化。条件是要让细胞直接受到致癌物的作用,从细胞受到作用后到发生恶性转化一般需两周到三个月的时间。


(一)原理


细胞转化基本过程包括诱发、损伤与修复、发展和表现3阶段。


1.诱发也称启动,是致癌物或诱变剂诱发损伤的过程。在实验中常用的是致癌化学物,它们分直接致癌物与间接致癌物。直接致癌物能直接损伤DNA诱发癌变;间接致癌物又称前致癌物,需经过某些酶的活化,形成终未致癌物后,才能发生致癌的作用,终未致癌物具有强的亲电子性质,易与细胞核中含电子多的DNA、RNA和蛋白质等相结合,从而导致DNA的损伤,发生转化过程中的启动作用。


2.DNA的损伤与修复DNA损伤后可进行自我修复。修复是一复杂的过程,存在着不同修复机制和产生不同的结果。无误性的修复可使损伤DNA复原,但错误性修复能引起DNA结构发生改变。当DNA损伤后如发生了错误性修复,而这种变化被固定下来即形成不可逆的改变,标志着发生了突变。


3.发展和表现细胞DNA受损和被固定后,通过细胞的反复增殖,使细胞损伤进一步得到发展和表现。受到一定剂量致癌物处理的细胞群,并非所有细胞都一定受到损害。受到诱发并进入转化发展阶段的细胞仅是一小部分,这些细胞称为癌前细胞(precancerouscell)。它们生长在那些未受损的正常细胞之中,随着转化而不断发展,细胞汇合后也不发生接触抑制,仍继续分裂增殖,并由于数量的增多而堆积起来,形成明显可见的转化灶。本实验将用仓鼠胚胎原代细胞进行转化实验。


(二)材料1.试验用细胞仓鼠胚胎,于妊娠后第13d取材。


2.试剂


(1)0.25%胰蛋白酶。


(2)N-甲基-N´-硝基一N一亚硝基胍(N-methyl—N´-nitro—N—nitrosoguanidine;MNNG)。


(3)含20%和5%小牛血清培养液。


(4)PBS。


(三)实验步骤


1.将数个或所有同窝妊娠后13d仓鼠胚胎取出,去头和内脏,在无菌条件下剪碎至米粒大小,再用0.25%胰蛋白酶(含O.01%EDTA)37℃中消化30min,吹打数次后滤过,1000r/min离心5min。去除上清液消化液,加Hanks洗一次,沉淀细胞加入营养液,制备5×105的细胞悬液,接种人培养瓶中,37℃培养2~3d,能迅速长满瓶。


2.选生长状态良好的细胞,冻存,贮以备用(传代过多不利细胞转化)。


3.致癌物处理取冻存细胞解冻接种人25[nl培养瓶中,每瓶含细胞(1~3)×lO5待细胞生长进入指数增生期时,向培养瓶中加入致癌剂。致癌剂常用MNNG,剂量为1~3μg/ml营养液,在37℃孵箱中培养12~48h。


注意:MNNG水溶液,有毒,用时注意防止污染环境;避光阴凉处保存,试验用液现配现用。用MNNG处理细胞不宜超过48h。


4.弃掉MbJNG作用液,用温PBS洗l~3次,加人含20%小牛血清培养液继续置孵箱中培养2~3周,(如用人细胞则需1~3个月),然后更换培养液,用含5%血清培养液培养。低血清培养液不利于正常细胞生长,但已转化的细胞仍可增殖,易形成转化灶。


5.转化灶的形成和分离:在成功情况下,用致癌物处理过的细胞于10d后.在正常细胞之间可产生数量不等的转化灶。转化灶由密集的重叠细胞群组成;灶的大小不等.小者由几十或几百个细胞构成,大者肉眼可见。


6.转化灶细胞分离纯化


可用两种方法:


(1)刮除法:先在有转化灶处瓶壁上用蜡笔圈出记号,再用胶皮刮刮未转化的正常细胞,向瓶内加入PBS冲洗掉刮除细胞后,加O.25%胰蛋白酶少许置37℃温箱中消化5~10min,待细胞松散后.弃掉消化液,加入新鲜含10%~20%小牛血清培养液,以中止残余胰酶消化作用,用吸管反复吹打转化灶,使之脱离瓶壁成细胞悬液,再置37℃温箱。


(2)消化法:先在瓶壁上用蜡笔圈出转化灶,弃掉瓶内培养液,选生长状态良好的转化灶,用小不锈钢环或无毒硅橡胶圈沾少许无菌明胶(不用亦可)套在转化灶上;向圈中滴20%胰蛋白酶充分消化后,用弯头吸管把胰酶与细胞一同吸出接种入新培养瓶中,再补加营养液少许;置孵箱中继续培养。数日后转化细胞迅速增殖成新的细胞群。


(四)结果观察


高倍镜下观察,转化细胞与正常细胞不同,如成纤维型细胞发生转化后,胞体变大成类多角形,生长无方向性,失去接触抑制,向三度空间伸延,细胞相互重叠。在转化灶的边缘转化细胞与正常细胞界限分明,形态区别非常明显。上皮细胞转化后,形态上不如成纤维细胞差别大,需仔细辨认。


(五)转化细胞的鉴定


用诱变剂或致癌物诱发细胞转化,获得转化细胞群后,为确定转化细胞的性状,需进一步做一系列实验分析进行转化细胞的鉴定。


1.细胞生物学一般性状:包括细胞形态、生长速度、倍增时间等。


2.细胞遗传学特征:核型分析,染色体组型畸变和标志染色体的有无。


3.恶性测试:浸润性试验,软琼脂培养,异体动物接种,凝集试验等。


以上测试中最主要的为第3项,说明发生转化的细胞是否为恶性转化。


来源:中国微生物菌种网www.bnbio.com

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